R语言ggcorrplot包绘制相关性热图

Python012

R语言ggcorrplot包绘制相关性热图,第1张

热图是科研论文中一种常见的可视化手段,而在转录组研究领域,我们常常需要分析一些基因与基因之间的相关性,来判断生物样本中是否存在共表达情况,以及共表达基因模块。除了基因集之间,其他方向,比如免疫细胞群体之间相关性,样本的相关性,也常常用相关性热图的形式进行展示。总而言之,往大了说,任何表征相关性的数值都可以用相关性热图来进行绘制。

常规热图示例

我们先来看看下面这张图,这是一篇发表在  PLoS Medicine  (IF = 11.048) 上的文章图,来看 22 种免疫细胞群体之间的相关性,其中红色的颜色代表正相关,蓝色代表负相关。每一格的数字代表相关系数。这是一种经常会用到的图形,不同于常规热图。常规热图中的每行代表一个观察值,每列代表一个样本,而我们在本次教程中,将为大家带来更高级,也更美观的相关性热图。

相关性热图

Step 1: R 包安装和数据输入

首先是安装必须 R 包,在这里我们需要用到 ggcorplot 和 ggthemes 这两个R包。

然后我们读入R表达谱数据。

数据一共有 10 个样本和 20 个基因,每一行为一个基因,每一列为一个样本,我们需要看这 20 个基因在这 10 个样本中的共表达情况,也就是基因和基因之间的相关性。

Step 2: 相关性计算

为了表示基因与基因相关性,我们除了要计算它们的相关性系数,还需要计算体现其显著性的  P  值。

计算相关性系数并显示前 6 个基因之间的相关性。相关性系数大于 0 为正相关,小于 0 为负相关。

计算基因与基因之间的相关性  P  值,其中  P  小于 0.05 认为这两个基因之间相关性是显著的。

Step 3: 相关性热图绘制

使用 ggcorplot 绘制基因与基因之间相关性热图。

Step 4: 初级美化 Circle

美化第一步,我们将矩形热图改成圆形

是不是大家瞬间觉得眼前一亮?

Step 5: 中级美化 Clustering

虽然有所美观,但是,这样上面一张相关性热图还是存在问题的,大家是否发现热图中的点非常乱,让人没办法捕捉到其中的规律,不容易让人一眼抓住重点。所以,我们要对基因进行聚类。

这张热图,已经是非常漂亮了,放在文章中绝对让人眼睛一亮,正相关负相关基因清清楚楚。

Step 6: 高级美化 Triangle

当然,我们还可以进一步改善。因为相关性之间其实是有对称在的,左上角和右下角的图其实是一样的,这样绘制比较占版面。只绘制左上角的热图,可以让我们的图看起来没有那么臃肿。

Step 7: 终级美化 Label

那么如何显示相关性强弱呢,虽然颜色和点的大小可以看出来,但是毕竟没有那么直观。所以我们将相关性系数加上,并更改热图颜色。

这样基因相关性热图就相当完美了,可以直接放在文章图中,而且比 PLoS Medicine 那篇文章看起来更漂亮呢。

Step 8: 究级美化 Omit

不过,如果我们想知道哪些基因显著性是小于 0.05 的呢,虽然颜色和点的大小以及相关性系数可以看出来,但是如果被老板们问起,模棱两可的回答,可是相当危险的哦。所以,我们把显著性p值加上,并且直接隐藏  P  小于 0.05 的基因。

GSE112996_merged_fpkm_table.txtGSE112996_series_matrix.txt,把GSE112996_series_matrix.txt解压,得到如下两个文件,把这两个文件放到对应的project文件夹内(备注:GSE112996_merged_fpkm_table是这个数据集的补充表达矩阵,不是所有数据集都有这个格式的)

可以看到读取的表达矩阵,第一列是基因名

去掉基因名,得到纯粹的表达矩阵raw_data

得到每种免疫细胞对应的基因

画相关图,原理和上面差不多

最近在一篇文献中看到了肿瘤纯度,当作背景知识补充一下。

ESTIMATE算法,可以根据表达数据估计肿瘤样本的基质分数(stromal score )和免疫分数(immune score),用于代表基质和免疫细胞的存在。两个分数相加即得到estimate score,可用于估计肿瘤纯度。

该算法于2013年发表在NC上: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3826632/

2015年又有一篇NC: https://www.nature.com/articles/ncomms9971#MOESM1235 。 用4种方法计算了TCGA样本的肿瘤纯度,其中就有ESTIMATE。

但作者的提供的帮助文档里只有芯片数据计算方式,而未提到转录组数据如何处理。我探索了一下发现,是可以计算的,作者在estimate网站上也提供了部分TCGA project的计算结果。

一番搜索找到曾老板写的帖子,可谓一站式找齐了:

关于算法: https://mp.weixin.qq.com/s/LiL_TZiJztUClz86a-aHWQ ,介绍了算法的基本原理和方法。

关于R包的用法: https://mp.weixin.qq.com/s/JTD8ZmH2YYCIqcbs-97JzA ,介绍了芯片数据如何得到三个score和肿瘤纯度

转录组数据计算: https://mp.weixin.qq.com/s/UehaaJZgARryH7P25v9wNQ ,介绍了转录组数据如何得到三个score和肿瘤纯度

找了TCGA的ACC count数据作为示例数据。如果你想要我的示例数据,请在生信星球公众号后台回复“est766”。​用自己的count数据也可以噢。​

这是曾老板写的函数,转录组数据与芯片数据计算过程不同的地方是 platform 是illumina。

affy芯片输出结果是有这一列的。

我对比了一下15年的那篇NC的方法部分,他们计算使用的是 level 3 RNA-seq profiles (RNAseqV2 normalized RSEM)数据,用estimate包计算了scores,用13年NC文章中的公式计算了肿瘤纯度。

公式是:

Tumour purity=cos (0.6049872018+0.0001467884 × ESTIMATE score)

不要忘了R语言是个好计算器

15年的文章给出了计算结果,我复现一下他的计算。RNAseqV2 normalized RSEM 数据不好找,我是从firehouse浏览器找到的,并进行了一些整理,让它变成了规范的表达矩阵。

我把这个计算结果与15年的NC做了比较,一毛不差,开心。

我把两个数据处理得到的结果组成一个表格来比较一下:

相差无几咯。非常完美的结果。

illumina输出结果不带有Tumorpurity列,这是包自身的设置。

在biostars上面看到一个讨论,有人认为estimate score 计算肿瘤纯度的公式是根据Affymetrix的芯片数据得出的,是专门针对芯片数据使用,因此不可以用于转录组。建议只计算出estimate score,用这个分数来代替肿瘤纯度的绝对数值用于后续分析。

原帖讨论见: https://www.biostars.org/p/279853/

然而NC 15年就已经发了这篇文章,五年来没人反对,可以认为人家做的是可用的,用就是了呗。